Инструкция по использованию стерилизатора микроцид. Принцип действия кварцевых ламп, бактерицидные свойства УФ излучения, рекомендации по дезинфекции помещений

Методический материал для медсестры процедурного кабинета. (МОЯ ШПАРГАЛКА)

Роль медицинской сестры в процессе лечения пациента, особенно в стационаре, трудно переоценить. Выполнение назначений врача, уход за тяжелобольными, проведение многих, иногда довольно сложных, манипуляций - все это является прямой обязанностью среднего медицинского персонала. Медицинская сестра также участвует в обследовании пациента, подготовке его к различным оперативным вмешательствам, работает в операционной в качестве анестезиста или операционной сестры, наблюдает за пациентом в отделениях реанимации и интенсивной терапии. Все это предъявляет высокие требования не только к знаниям и практическим навыкам медицинской сестры, но и к ее моральному облику, умению вести себя в коллективе , при общении с пациентами и их родственниками.

Медицинская сестра должна неукоснительно выполнять указание врача и точно соблюдать не только дозировку лекарства и длительность процедур, но и их последовательность. Назначая время или периодичность введения препаратов, врач учитывает длительность их действия, возможность сочетания с другими лекарствами. Поэтому небрежность или ошибка могут оказаться чрезвычайно опасными для пациента и привести к необратимым последствиям.

Современные лечебные учреждения оснащены новой диагностической и лечебной аппаратурой. Медицинские сестры должны не только знать, для чего служит тот или иной прибор, но и уметь им пользоваться, особенно, если он установлен в палате. При выполнении сложных манипуляций медицинская сестра, если она не чувствует себя достаточно подготовленной для этого или сомневается в чем-то, не должна стесняться просить помощи и совета у более опытных коллег. Точно также медицинская сестра, хорошо владеющая техникой, той или иной манипуляцией, обязана помогать осваивать эту технику своим менее опытным товарищам. Самоуверенность, зазнайство и высокомерие недопустимы, когда речь идет о здоровье и жизни человека Обязательным качеством медицинской сестры должно быть стремление к постоянному повышению своей квалификации, углублению знаний, приобретению новых навыков. Этому должна способствовать общая атмосфера лечебного учреждения, играющая важную роль в формировании высококвалифицированного и ответственного работника, выработке у него высоких моральных качеств, гуманизма и умение всем своим поведением способствовать возвращению здоровья и трудоспособности больному человеку.

Инфекционный контроль - это система эффективных профилактических и противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения госпитальных инфекций, основанная на результатах эпидемической диагностики.

Целью инфекционного контроля являются снижение заболеваемости, летальности и экономического ущерба от госпитальных инфекций. Госпитальная инфекция - это любые инфекционные заболевания, проявившиеся в условиях стационара. К госпитальным инфекциям также относятся случаи инфицирования медицинских работников ЛПУ, возникшие в результате их профессиональной деятельности .

Для предупреждения внутрибольничной инфекции медицинская сестра обязана:

· раздельно хранить верхнюю одежду и спецодежду,

· не выходить в спецодежде за пределы территории больницы,

· не носить спецодежду в неслужебное время.

Работа в процедурном кабинете начинается с текущей уборки.

Процедурная медсестра снимает с рук украшения (часы, браслеты и кольца). Волосы убирает под шапочку, одевает маску.

Текущая уборка процедурного кабинета проводится не менее 2-х раз в сутки, при необходимости чаще: утром перед началом рабочего дня и в конце рабочей смены. Влажную уборку всегда необходимо сочетать с дезинфекцией и бактерицидным облучением помещения. Для дезинфекции могут быть использованы любые дезсредства разрещённые к применению и имеющиеся в наличие, согласно методических инструкций к раствору.

Медсестра или санитарка для уборки надевает халат и перчатки. В специальную ёмкость наливает дезраствор и закладывается чистая ветошь для обработки поверхностей. Протираются все поверхности в строгой последовательности - стол для стерильного материала, шкафы для стерильных растворов, оборудование, манипуляционные столы, стулья, кушетки для больных, стены на уровне вытянутой руки (1.5м) от окна к двери.

Для уборки используется специально выделенный уборочный инвентарь , имеющий чёткую маркировку с указанием помещения, вида уборочных работ и специально выделенное место хранения.

Гигиеническую обработку рук кожным антисептиком следует проводить в следующих случаях: перед непосредственным контактом с пациентом

Перед надеванием стерильных перчаток и после снятия перчаток при постановке центрального внутрисосудистого катетера или внутривенных инъекций и др. процедур, связанных с целостностью кожных покровов.

Гигиеническую обработку рук кожным антисептиком (без их предварительного мытья) проводят путём втирания его в кожу кистей рук в количестве, рекомендуемом инструкцией по применению, обращая особое внимание на обработку кончиков пальцев, кожу вокруг ногтей, между пальцами. Непременным условием эффективного обеззараживания рук является поддержание их во влажном состоянии в течение рекомендуемого времени обработки.

Обратите внимание, чем моете руки:

Перед тем как использовать средство в дозаторе, обращайте внимание если в инструкции добавлено активное вещество с моющим эффектом это значит руки мылом перед использованием раствора мыть не нужно, после сушим руки одноразовым полотенцем надеваем ст. перчатки;

Если на флаконе написано, что жидкое мыло с антисептическим эффектом, то после мытья руки сушите одноразовым полотенцем и надеваете ст. перчатки;

Если написано, что кожный антисептик, значит моем руки с мылом в течении времени, указанного в методичке по использованию мыла

М/с моет руки под проточной водой с мылом не менее 2 мин. (время намыливания рук указано в методичках на конкретное название используемого средства). Сушит руки стерильной салфеткой или одноразовым полотенцем и этим же полотенцем или салфеткой, которым вытирали руки закрываем кран с водой, а если нет стерильной салфетки, то для накрытия большого стерильного стола предусмотрено 10грамм 70гр. спирта, а мини стола 3,0 спирта льём на руки и высушиваем руки крепко втирая спирт в ладони, одеваем стерильные перчатки.

Накрытие стерильного стола: Обязательно на биксе должна быть бирка, на которой написано что находится в биксе и в каком количестве, т. к. после стерилизации буквы написанного часто стираются нужно постоянно их обновлять, а также должна быть указана дата и время стерилизации и дата и время вскрытия бикса. Если набор простерилизован в крафт бумаге, то дату и время вскрытия пишется на бумаге, крафт-бумага используется для стерилизации однократно.

Перед извлечением простерилизованных материалов инструментов (до вскрытия биксов):

Визуально оценивают плотность закрытия крышки стерилизационной коробки или целостность стерилизационной упаковки однократного применения;

Проверяют цвет индикаторных меток химических индикаторов, в том числе на стерилизационных упаковочных материалах;

Проверяют дату стерилизации;

На бирке бикса, упаковочном пакете ставят дату, время вскрытия и подпись вскрывавшего.

В журнале учёта стерилизации обязательно пишется № бикса, наличие изделий медназначения, время вскрытия бикса (пакета) и приклеивается индикатор качества стерилизации, взятый изнутри вскрытого бикса (пакета).

Перед подготовкой стерильных министолов медсестра обрабатывает (гигиеническая обработка) руки спиртосодержащим кожным антисептиком по технологии,

надевает стерильные перчатки. Накрытие большого инструментального стола (после обработки рук м/с одевает стерильный халат, стерильные перчатки) достаёт пинцетом из бикса две стерильные простыни, каждая из которых сложена вдвое, раскладывают на левую и правую половины стола местами сгиба - к стене. Простыни располагают внахлёст таким образом, чтобы по центру стола края одной простыни заходили на другую простыню не менее чем на 10 см., а края простыней со всех сторон стола свисали примерно на 15см. Поверх этих простыней выстилают третью простыню в развёрнутом виде так, чтобы её края свисали не менее чем на 25см. Стол с разложенными на нём инструментами сверху накрывают стерильной простынёй, сложенной вдвое по длине простынного полотна, или двумя простынями в развёрнутом виде. Большой стерильный стол накрывается на 6 часов.

В процедурных кабинетах мини стерильный стол накрывается на 2 часа.

Первый лоток (министол) со стерильным материалом

Второй лоток (министол) для временного хранения шприцов

На стерильном столе или мини лотках иметь маркировку дата и время накрытия стерильного стола.

После изучения листа назначения м/с, готовит ампулы с лекарственным средством, упаковку с перчатками, шприцы в упаковке. Моет руки, из пакетика вытряхивает шприц на лоток, для временного хранения стерильного материала, обрабатывает руки антисептиком, одевает стерильные перчатки, на стерильный ватный тампон льётся спирт протирается шейка ампулы, и флаконы с лекарственным средством, ампулы подпиливаем и сухим стерильным ватным тампоном, отламываем подпиленный кончик ампулы.

Обрабатываем руки антисептиком

Правой рукой взять иглу за пластмассовый колпачок и вращательным движением муфту иглы насадить на шприц и хорошо притереть. Собранный шприц при необходимости положить на стерильную пелёнку;

Ампулу/флакон взять в левую руку, правой ввести иглу надетую на шприц набирается нужное количество препарата, по мере надобности наклоняя их;

Удалить пузырьки воздуха из шприца, повернув шприц вертикально иглой вверх, надавливая на поршень, постепенно выдавить воздух из шприца;

Недопустимо прижимать стерильные ватные шарики к горлышку флакона со спиртом или отжимать руками смоченный спиртом шарик в общую ёмкость со спиртом, заранее смачивать спиртом большую партию ватных шариков и хранить их в течение длительного срока;

В ходе работы с пациентом строго выполняются правила профессиональной безопасности.

Инъекции выполняются в стерильных резиновых перчатках, со сменой их после каждого пациента;

Крышки флаконов, ампулы перед вскрытием обрабатываются стерильным тампоном, смоченным 70гр. этиловым спиртом;

Кожа в месте инъекции последовательно обрабатывается двумя стерильными ватными тампонами с 70гр. этиловым спиртом: вначале большую зону, затем-непосредственно

место инъекции;

После инъекции к раневой поверхности прикладывается новый стерильный тампон;

На каждую инъекцию используют 2 иглы (для разведения и набора инъекционного раствора и для инъекции);

При проведении парентеральных манипуляций в палате, включая постановку систем используется передвижной инструментальный столик, на верхней полке которого собирается стерильный мини лоток, на котором находится шприц с набранным лекарством между двумя слоями стерильной пелёнки, а также стерильные марлевые салфетки и ватные шарики, для инъекций на конкретного больного. Там же ставится флакон с 70гр. спиртом и пакет со стерильными перчатками. На нижней полке находится ёмкость для использованного материала.

Медсестра заряженную систему относит в палату вместе с инструментальным столиком, затем моет руки в процедурном кабинете. В палате больному завязывает жгут на руку, обрабатывает руки антисептиком (в это время больной работает кулаком, чтобы лучше было видно вену, для инъекции). Надевает стерильные перчатки, смачивает стерильный ватный тампон антисептиком, протирает место инъекции по схеме дважды, делает в/в инъекцию, закрепляет систему, накрывает иглу стерильной марлевой салфеткой.

После окончания капельницы иглу вынимают, прикладывают ватный тампон со спиртом на место инъекции. Систему вынимают из бутылки и аккуратно укладывают в лоток для использованного материала не отсоединяя иглу от системы. Весь использованный материал на инструментальном столике возвращается в процедурный кабинет. Где м/с в перчатках берёт зажим и аккуратно отсоединяет иглу от системы и закладывает её в непрокалываемую ёмкость для дезинфекции игл, остатки лекарственных средств из системы сливает в ёмкость, для биологической жидкости. Затем систему закладывает в ёмкость для дезинфекции систем, шприц промывается в 1 ёмкости для промывания шприцов и укладывается во 2 ёмкость для дезинфекции шприцов.

Недопустимо возвращать неиспользованный стерильный материал в общую упаковку;

9. Вымытый холодильник вытереть досуха тканью.

Обработка бактерицидных ламп во время генеральной уборки

1. Корпус бактерицидной лампы обрабатывается тем же дез. средством, каким обрабатываю поверхности, а стеклянную часть обрабатывают 95гр. спиртом из расчёта 5гр. на одну большую лампу, на маленькие 2,5гр.

2. Один раз в месяц каркас лампы обрабатывают 3% раствором перекиси водорода на 1 литр 5гр. моющего средства.

3. Во время текущей уборки каркас лампы протирается дез. средством, которым проводится обработка поверхностей, а стеклянная часть лампы протирается сухой стерильной салфеткой.

При проведении генеральной уборки используется 3 ветоши (1-я для мыльно-содового раствора, 2-ой наносится дезсредство, 3-ей (стерильной) смывается дезсредство после экспозиции), Ген уборка проводится по графику, утверждённому зав. отделением. Ответственным лицом за проведение генеральной уборки является старшая медицинская сестра отделения. В тетради ген. уборок на первом листе обязательно должно быть написано метраж обрабатываемой поверхности, требуемое количество дезинфицирующего средства, также при текущей уборке и примерное время начала генеральной уборки, чтобы не было накладки с журналом учёта кварцевания кабинета после проведённой ген. уборки.

Теперь расчёт дезсредств в журнале проведения генеральных уборок.

У старшей м/с должны быть расчёты на дезсредства для уборки всех помещений отделения или кабинетов поликлиники. Так как уборка всех помещений кроме служебных кабинетов (ординаторские, каб. старш. м/с и др.) проводятся с применением дезсредств. Поэтому нужно сделать папку, в которой будут храниться методички и сертификаты на дезсредства, используемые в отделении, а также расчёты на все помещения. У ст. м/с должны быть данные о потребности дезсредств на 1,3,6мес.

Чтобы она в любой момент могла их представить главной м/с для закупа на будущее, зная свой остаток. Также не забывать про дезинфекцию отработанного материала и изделий медназначения и пр., и предстерилизационную обработку инструментария

Для расчётов дезсредств нужно обязательно знать площадь всех помещений.

1. S - площадь

2. L – длина кабинета

3. H – высота кабинета

4. D – ширина кабинета

Например

S – пола 6х4=24м. х 2 (если проводится помывка потолка)

L – 6метров х 2 (2стены)

D – 4 метра х 2(2стены)

H – 2.5метра для ген. уборки на текущую уборку берётся высота 1.5м.

Узнаём площадь всех поверхностей стен и пола

1) Стены по длине 6 х 2.5 х 2= 30м2

2) Стены по ширине с учётом окон и дверей (площадь окон можно в конце вычесть) 4 х 2.5 х2 = 20м2

3) Пол 6х4+ потолок 6х4 = 48м2

S=30+20+48 =98м2

Не забывайте, что во время ген. уборок моются холодильники, шкафы, столы, стулья, кушетки и прочая мебель.

Все растворы дезсредства на протирание берутся 100мл. на 1 кв. м.

Заболеваемость населения современного общества все больше зависит от загрязненности окружающей среды и воздуха вирусами и бактериями. Именно они являются причиной многих заболеваний. Чтобы устранить и не дать распространиться многим из них важен процесс обеззараживания воздушной массы.

В современной медицинской практике используются несколько методов обеззараживания:

1. Использование бактерицидных фильтров;
2. Бактерицидные средства, представленные в виде аэрозолей;
3. Озоновое излучение.

Рассмотрим принцип действия каждого из них.

Фильтр – по сути, это предмет, который с легкостью пропускает через себя массу воздуха и задерживает грубые (крупные) или мелкие частицы примесей. Это может быть пыль, неприятные запахи, мелкие частицы от строительных материалов и др.

Очищается он при прохождении через составляющие материалы фильтра. Согласно санитарным нормам, все очистительные фильтры могут быть грубой и тонкой очистки. Этот параметр зависит от степени загрязненности воздуха, а также размеров примесей.

Для использования в медучреждениях подбор очистительных средств идет исходя из функциональности, то есть важно то, что должно быть достигнуто после прохождения воздуха сквозь фильтр. Например, для очистки помещения реанимации, операционных палат, послеродовых комнат, очистка воздуха должна достигать 99%. Здесь используются фильтры самой высокой эффективности.

Все фильтры можно разделить на несколько видов:

Механические

С их использованием предполагается предварительная грубая очистка. Они устанавливаются во всех очистительных системах воздуха. Механические фильтры являются защитой более тонких деталей очистки.

Они могут быть представлены в виде мелкоячеистой сетки, поролона или ткани. Такие фильтры дольше служат, так как просты в чистке. Достаточно промыть водой или вытряхнуть примеси.

Угольные

Специальный наполнитель таких фильтров способен поглощать ядовитые вещества, содержащиеся в воздухе, а также неприятные запахи.

Пример такого фильтра – это противогаз, газовая вытяжка. Угольный фильтр, как правило, используется в дополнение к механическому.

Электростатические

Самый тонкий фильтр, который способен улавливать и задерживать самые мельчайшие частицы. Принцип работы – притяжение электронных частиц, заряженных противоположно.

Основу фильтра составляет ионизационная камера, через которую и проходит грязный воздух. В камере все примеси заряжаются под знак плюс, затем оседают на заряженную пластину и становятся со знаком минус.

Чистка производится просто, достаточно промыть данную пластину с мылом в проточной воде. Отлично удерживает микроскопичные частицы загрязнений, например, сажу или пыль. Но отмечены его недостатки. Фильтр не задерживает органические соединения, химические элементы и уксус, а также углекислый газ.

Фотокаталитические

Способны удерживать вирусы и другую патогенную флору, которая уничтожается внутри самого прибора.

Облучение ультрафиолетовыми лучами проводится с помощью специальных бактерицидных ламп и облучателей. Принцип действия такого очищения основан на химическом процессе.

Электрические зараженные частицы проходят сквозь разряженный газ, таким может выступать пары ртути, который расположен внутри герметического сосуда. Такой алгоритм вызывает излечение. Рассмотрим подробнее какие же приборы использую для излечения.

Этот осветительный прибор по своей сути, является искусственным излучателем. Эти лампы широко используются в медицинских учреждениях для очистки воздуха и поверхностей помещения от болезнетворных вирусов и микроорганизмов. Светящиеся приборы вы можете знать под названием кварцевые лампы.

Основное действие этого прибора заключается в оказании губительного эффекта на патогенную флору посредством ультрафиолетового излучения. Особое внимание в работе лам отводится сроку эксплуатации, так как на начале своего функционирования лампа работает очень эффективно, но когда срок службы приближается к концу и если лампа использовалась некорректно, то показатели уничтожения вирусов и бактерий сводится к нулю.

При рассмотрении этот прибор представлен в виде тонкой трубки из увиолевого стекла, которое способно пропускать только ультрафиолет. Через такое стекло не пропускается часть озонообразного излечения, которое несет для человека опасность, только та часть, которая губит инфекции.

Поэтому в помещении, где включены кварцевые лампы отсутствуют ядовитые вещества. Поэтому, согласно рекомендациям, помещение, в котором проводится такая обработка обычно не проветривают, но на период работы лампы все же необходимо покидать комнату.

Важно! Бактерицидные лампы способны увеличивать сопротивляемость человеческого организма к различного рода инфекциям. Поэтому их используют для лечения или профилактики вирусных заболеваний.

Одним из максимально эффективных способов обеззараживания является ультрафиолетовое облучение. Ярким представителем приборов, использующих этот метод является бактерицидная камера Микроцид, в которой источником облучения являются разрядные бактерицидные лампы низкого давления, генерирующие коротковолновое излучение. Это дает возможность Микроциду самым действенным образом бороться с самыми разнообразными разновидностями бактерий и вирусов. Основная доля облучения в подобных лампах составляет диапазон волн 254 – 265 нм, а именно этот спектр проявляет высокие бактерицидные свойства и эффективно уничтожает все микроорганизмы, включая условно-патогенные и патогенные.

Испытания показали, что за три минуты бактерицидная камера Микроцид полностью уничтожает вирусы гриппа, гепатита, кишечные палочки, стафилококки, СПИДа, кори, краснухи, туберкулеза, полиомиелита, их споровые формы (BacillusSubtilis) и грибковую флору на струментах, которые подвергаются воздействию ультрафиолетового облучения.

Применение

• и парикмахерских
• педикюрных и маникюрных кабинетах
• больницах и поликлиниках для осуществления дезинфекции (бактерицидной обработки) инструмента, за исключением инструмента, который применяют в процедурах связанных с нарушением целостности кожного покрова

Устройство камеры

В корпусе камеры используется антистатичная пластмасса, а оригинальное устройство зоны облучения камеры позволяет достичь максимальной эффективности бактерицидной обработки. Зона облучения камеры Микроцид изготовлена исключительно из высококачественных материалов с весьма высоким коэффициентом отражения ультрафиолетовых лучей.

Ультрафиолетовые лучи излучают две UV лампы, которые не выделяют озон. На дне камеры имеется специальная подставка, обеспечивающая равномерное облучение инструментов со всех сторон, при этом осуществляется бестеневое объемное воздействие.

Функции блока управления

• диагностика бактерицидных ламп на возможные неисправности;
• автоматическая работа камеры;
• безопасное автоматическое отключение ламп при открытии камеры во время работы, что помогает избежать попадания в глаза света лам;
• оповещение звуковыми сигналами различных режимов и фаз работы прибора. Так, оповещение происходит в случае завершении цикла обработки инструментов, при несоответствующем напряжении сети и неисправности бактерицидных ламп.

Подготовка стерилизатора Микроцид к работе

Перед подготовкой камеры к работе сетевой провод следует отсоединить от сети, чтобы исключить опасность .

Каждый день перед началом работы камеру следует тщательно промывать снаружи применяя для этого средства, назначенные для осуществления предварительной стерилизации. Во время предстерилизационной очистки нельзя допускать попадания жидкости в вентиляционные отверстия корпуса. Внутренние поверхности камеры два раза с перерывом в полчаса протирают ветошью, смоченной 6% р-ором перекиси водорода, после чего дают камере обсохнуть. Бактерицидные лампы также следует обрабатывать, не реже раза в месяц, но только спиртом 70-96%. Включают камеру в сеть лишь после того как она просохнет.

Когда камера включается, на ее цифровом табло появляется начальное значение периода обеззараживания в три минуты. Обеззараживание внутренних поверхностей и пространства камеры и подставки должно быть проведено предварительно. С этой целью вымытая и высушенная подставка устанавливается на основание вниз дно камеры, после чего закрывается крышка и нажимается кнопка «ПУСК» на блоке управления. Через эти три минуты звучит звуковой сигнал, который свидетельствует, что камера обеззаражена и готова к работе.

Подготовка инструментов перед помещением в стерилизатор

Перед размещением инструмента в бактерицидной камере его также следует промыть и высушить согласно действующим «Санитарным правилам». После этого инструмент укладывают на помещенную на дно камеры подставку так, что все части инструмента должны быть подвержены излучению, поскольку следует полностью избежать риска заражения поверхностей. Щипцы и ножницы с этой целью следует раскладывать в развернутом виде.

Бактерицидная обработка инструмента

После укладки инструмента закрывают крышку инажимают кнопку «ПУСК». На табло появляется мигающая сигнальная точка, которая свидетельствует, что в приборе происходит процесс облучения, а показания индикатора при этом уменьшаются. По истечении процесса, то есть, через три минуты, автоматически завершают свою работу и на табло появляется цифра «0» и звучит звуковой сигнал.

Чтобы достать инструменты необходимо открыть крышку, что вызывает срабатывание системы блокировки, отключающей бактерицидные лампы и выставляющей показания индикатора в исходное состояние, то есть — «3» минуты. Повторный запуск цикла облучения возможетпосле закрытия крышки и нажатия кнопку «ПУСК».

Технические характеристики стерилизатора Микроцид

• Мощность — 70 Вт
• Напряжение питания — 220 В;
• Время полной дезинфекции — три минуты
• Применяемые лампы — TUV-8W Philips, срок их службы составляет 8000 часов
• Диапазон интенсивности облучения –от 14,0 до 21,0 Вт/м2;
• Габариты стерилизатора- 245х380×125 мм, а камеры для инструментов — 165х250×95 мм
• Вес устройства — 3 кг

При хранении и переработке пищевого сырья происходит дополнительное инфицирование его микроорганизмами от средств транспортировки и оборудования, воздуха производственных помещений, обслуживающего персонала и т. д.

Ни стерилизация, ни другие виды специальной обработки не обеспечивают стойкости готовой продукции, если на предприятии высокая микробная обсемененность сырья и технологического оборудования. Предупредить контактные инфекции можно лишь при тщательном соблюдении санитарно-гигиенических требований к условиям производства.

Метаболизм микроорганизмов приводит к химическому и физическому изменению пищевых продуктов, вызывающему биологическую нестабильность и снижение их качества (изменение вкуса, консистенции или полная порча), возникновение пищевых отравлений и опасных для жизни инфекционных заболеваний. Условия для развития микрофлоры зависят от вида перерабатываемого сырья (химического состава, структуры, консистенции) и разных внешних факторов (температуры, содержания кислорода в воздухе), которые неодинаковы для различных отраслей пищевой промышленности. Вредную микрофлору в зависимости от происхождения можно разделить на две основные группы: сапрофитную и патогенную. С точки зрения практической микробиологии пищевых продуктов, нет необходимости в четком разделении между этими группами микроорганизмов, однако для разработки научно обоснованных методов дезинфекции такой анализ представляется полезным.

К сапрофитным относятся микроорганизмы, ухудшающие качество продукции или безвредные для нее. Они принадлежат к различным группам - бактериям, плесневым грибам и дрожжам, причем по количеству представителей и причиняемому Ущербу ведущее место занимают бактерии. При нарушении санитарно-гигиенических требований сапрофитная микрофлора может развиваться в большинстве продуктов и образовывать токсичные продукты обмена, потребление которых может привести к тяжелым пищевым отравлениям и даже к смертельному исходу.

Значительное место в пищевом рационе занимают молоко и молочные продукты. Вместе с тем молоко является скоропортящимся продуктом и представляет собой благоприятную среду для развития возбудителей различных пищевых инфекций и микроорганизмов, вызывающих отравление. Микробное заражение молока может привести также к различным порокам готового продукта. Так, развитие бактерий Streptococcus lastis приводит к скисанию молока, бактерии Alcaligenes viscosus вызывают свертывание молока и придают ему прогорклый вкус. Горький вкус появляется также при наличии в молоке протеолитических бактерий Streptococcus liquefaciens. На микробиологические показатели при переработке молока и молочных продуктов существенное влияние оказывает качество дезинфекции производственных емкостей и технологического оборудования, которые служат источником вторичного обсеменения сырья нежелательной микрофлорой.

В производстве хлебобулочных изделий существенную трудность представляет проблема засорения посторонней микрофлорой культурных пекарских дрожжей при непрерывном технологическом процессе их приготовления в ферментерах. Низкая pH мелассового сусла препятствует бактериальной инфекции, однако масляно-, молочно — и уксусно-кислые бактерии могут активно развиваться. Спороносные бактерии рода Clostridium создают условия, неблагоприятные для размножения пекарских дрожжей, и придают им неприятный прогорклый вкус.

Использование при выпечке хлеба пшеничной муки, инфицированной спорами Bacillus mesentericus, может привести к его заражению тягучестью (картофельной болезнью) и распространению ее на всем хлебопекарном заводе. Кроме того, наличие в воздухе указанных спор приводит к инфицированию последующих партий чистой муки.

Наряду с бактериальной микрофлорой в хлебопекарной промышленности нежелательным является также развитие диких дрожжей.

На пивоваренных заводах к вредным микроорганизмам относят дикие дрожжи родов Saccharomyces, Candida и другие, а также молочно — и уксусно-кислые бактерии Lactobacillus, Micrococcus, Sarcinia. При инфицировании пиво сильно мутнеет, появляются горечь и неприятный вкус, посторонние запахи. Известную роль вредителей пивоваренного производства играют плесневые грибы Penicillium, Aspergillus и др. Наиболее опасными, вызывающими помутнение и почти всегда быстрое прокисание пива, являются молочно-кислые бактерии в форме кокков и палочек, устойчивые к кислоте и антисептическому воздействию хмеля. Микрофлора хорошо адаптируется к производственным условиям и очень быстро развивается даже при температуре бродильного и лагерного подвалов. Источником инфекции при главном брожении и дображивании могут быть чаны, танки и другие технологические резервуары.

При хранении и переработке фруктов и овощей причины порчи весьма разнообразны. Наряду с процессами ферментативного разрушения значительную роль играют различные виды микробных возбудителей гнили. Многие возбудители проникают в плоды еще во время их развития, однако определенный ущерб наносит инфицирование плодов в хранилищах, технологическом оборудовании и т. д. Фрукты и овощи (особенно с нарушенной естественной защитной системой) являются хорошей питательной средой для микроорганизмов, поэтому каждый год в результате гниения плодов теряется значительная часть урожая. На практике, в зависимости от вида микроорганизмов-вредителей и внешней картины болезни, различают несколько наиболее распространенных форм порчи. Гриб Rhizopus nigricans и родственные ему виды приводят к возникновению бактериальной мокрой гнили плодов, преимущественно клубники. Фрукты с сухой гнилью, которая известна также под названием серая гниль, поражены грибами рода Gloeosporium. Сердцевинная гниль является следствием поражения плодов различными видами - Fusarium, Botrytis, Alternaria, Penicillium, Frichothecium, Cladosporium и др. Инфекционное заболевание плодов - горькую гниль вызывают три вида Gloeosporium perennans, G. album и G. fructigenum с Glomerella cingulata в качестве основной плодовой формы. Горькая гниль может привести к значительным потерям вишни. Одна из форм горькой гнили, вызванная Trichothecium roseum, имеет ограниченное распространение на поверхности фруктов и названа гнилью оболочки. К распространенным формам микробной порчи плодов относятся также коричневая гниль, возбудителем которой являются грибы рода Sclerotinia, земная гниль, обусловленная плесневыми грибами Penicillium expansum, фруктовая гниль (возбудитель - Phytophthora cactorum) и др. Помимо важнейших возбудителей плодовой гнили, рассмотренных выше, продукты растениеводства могут подвергаться воздействию и других многочисленных микроорганизмов, вызывающих порчу. Это особенно следует учитывать при хранении и транспортировке спелых фруктов.

По химическому составу фруктовые соки и морсы являются благоприятной средой для развития многих микроорганизмов. Потребляются фруктовые соки значительно позже их производства, в связи с чем возникает необходимость в хранении и обеспечении стойкости большого количества соков. Для уничтожения вредных микроорганизмов в свежем соке используют различные способы специальной обработки: насыщение CO 2 , замораживание, стерилизацию и пастеризацию, обеспложивающую фильтрацию и др. Последующее хранение осуществляют преимущественно в танках, стеклянных баллонах, бочках и бетонных резервуарах. При этом серьезной проблемой является загрязнение производственных емкостей патогенной микрофлорой, приводящей к быстрой порче соков вследствие спиртового брожения, плесневения, молочно-кислого брожения и других нежелательных изменений.

К бактериальной порче фруктовых соков приводят преимущественно кислотообразующие виды, такие, как молочно-, уксусно — и масляно-кислые бактерии. Бактериальное инфицирование обычно проявляется помутнением соков, значительным содержанием молочной, уксусной и масляной кислот, образованием газов. Дрожжи приводят к помутнению, образованию донного осадка и плесневой пленки на поверхности соков. Дрожжи рода Schizosaccharomyces вызывают биологическое кислотопонижение и брожение плодово-ягодных соков.

Сложной многокомпонентной неустойчивой системой, способной изменяться под действием различных физико-химических и биологических факторов, является вино. К изменениям биологического характера относятся заболевания вин, вызываемые различными родами бактерий, дрожжей и плесневых грибов. Так, молочно-кислое брожение крепких и десертных вин вызывают бактерии Lactobacteria сеае, уксусно-кислые бактерии Acetobacter aceti, Acetobacter xylinum, Acetobacter Kutzingianum, Acetobacter Pasterianum являются причиной уксусного скисания вин-опасного и наиболее распространенного заболевания. Ряд патогенных бактерий приводит к ожирению вина, прогорканию, появлению мышиного привкуса и другим порокам. К группе дрожжей-вредителей винодельческого производства относятся различные виды спорогенных дрожжей родов Saccharomyces, Hansenula, Pichia, Saccharomycodes, Zygosaccharomyces, Schizosaccharomyces и не образующих спор дрожжей Candida mycoderma, Brettonomyces и др. Пленчатые дрожжи (Candida mycoderma, Hansenula, Pichia) являются возбудителями цвели вина, вызывают помутнение и дестабилизацию столовых вин. Следует отметить, что в виноделии существенную роль в обеспечении вкуса вина и его стойкости при хранении играет чистота технологических емкостей, в которых вино образуется, формируется, созревает и стареет. Недоброкачественно подготовленные производственные резервуары являются постоянным источником образования болезнетворной микрофлоры, вызывающей разнообразные пороки вина и придающей ему посторонние привкусы и запахи.

Еще большую опасность, чем порча пищевых продуктов, представляет возможность инфицирования пищевого сырья во время переработки и последующего попадания в готовые пищевые продукты промышленного производства токсичных микроорганизмов. Патогенные микроорганизмы (энтеробактерии или кишечные бактерии) включают разнообразную по свойствам микрофлору от сравнительно безвредной до сильно патогенной, вызывающей опасные для жизни инфекционные заболевания (брюшной тиф, дизентерию, паратифы и др.).

Одним из характерных микробиологических возбудителей болезней, передаваемых через продукты питания, являются бактерии группы Salmonella. Сальмонеллез обычно развивается в результате потребления зараженных продуктов, приготовленных или сохранявшихся в условиях, благоприятных для развития этого микроорганизма. Основным источником заражения человека сальмонеллами считаются продукты животного происхождения (мясо, домашняя птица, непастеризованные яичные продукты). Так, употребление яичных продуктов, содержащих значительное число микроорганизмов группы Salmonella, в качестве компонентов при производстве хлебобулочных изделий или в готовых салатах может вызвать вспышку отравления, так как эти продукты не подвергаются тепловой обработке, достаточной для уничтожения указанных микроорганизмов. Продукты, производимые или обрабатываемые с нарушением санитарно-гигиенических норм, могут быть инфицированы сальмонеллами и при неправильной транспортировке, хранении и приготовлении могут стать источником заболевания.

Другое распространенное инфекционное заболевание - шигеллез вызывают бактерии Shigella. Установлено, что Shigella dysenteriae вырабатывает энтеротоксин с высокой цитотоксичностью. Наиболее распространенным представителем группы кишечной палочки, ответственным за диарейные заболевания, являются бактерии Escherichia coli. Важное значение имеют и другие серотипы. При этом необходимо отметить, что Е. coli не всегда бывают патогенными. Помимо рассмотренных, причиной пищевых токсикоинфекций могут явиться и другие грамотрицательные бактерии: Pseudomonas, Yersinia enterocolitica и др.

Одна из наиболее распространенных пищевых инфекций - ботулизм, вызываемый бактериями Clostridium botulinum. Возбудители ботулизма хорошо размножаются в кулинарно обработанных и длительное время хранящихся продуктах. Большинство мясных, рыбных, овощных консервов являются для них благоприятной средой. Известны также случаи развития этих бактерий в некоторых фруктовых консервах.

Имеются сведения о пищевых токсикоинфекциях, связанных с аэробными спорообразующими бациллами. Bacillus cereus относится к крупным грамположительным аэробным спорообразующим бациллам, способным расти и в анаэробных условиях. Микроорганизм ответствен за порчу пастеризованного молока и сливок (прогоркание). Однако данные позволяют отнести эти бациллы к числу патогенных микроорганизмов. В малых количествах Bacillus cereus не опасен, поэтому основной задачей профилактических мероприятий должно являться предотвращение прорастания спор и последующего размножения вегетативных клеток в готовых продуктах.

Проблемой международного значения являются энтеротоксикозы, вызванные стафилококковой микрофлорой. По данным, около 50% выделяемых Staphylococcus aureus способны при испытаниях в лабораторных условиях вырабатывать энтеротоксин, более того, один и тот же штамм может вырабатывать два и более энтеротоксина.

Вспышки септической ангины и скарлатины являются результатом пищевых токсикоинфекций, вызванных бактериями Streptococcus. Потребление сырого молока и его продуктов, инфицированных бактериями Brucella, приводит к заражению бруцеллезом. Хотя в молоке бактерии Brucella не размножаются, они переносят естественное скисание и процессы переработки молока при изготовлении таких продуктов, как масло, мягкие сыры и мороженое. В окружающей среде при отсутствии прямого солнечного освещения бактерии Brucella сохраняются в течение многих недель и могут переносить замораживание, однако дезинфицирующие средства и нагревание свыше 333 К приводят к их инактивации.

Присутствие вирусов в пищевом сырье может привести к инфекционным заболеваниям вирусной природы, таким, например, как инфекционный гепатит, полиомиелит, гастроэнтерит и др. Возможным источником вспышек инфекционного гепатита являются холодные мясные продукты и салаты, реже молоко и молочные продукты. Причиной заражения пищевого сырья кишечными вирусами является контакт загрязненной воды или рук человека с технологическим оборудованием.

Вирусы размножаются только в соответствующих живых клетках, поэтому при попадании в пищевые продукты они могут или сохраниться, или инактивироваться (потерять инфекционность). Основным фактором, определяющим устойчивость вирусов в продуктах питания, является температура. Термическая обработка, сопоставимая по интенсивности с пастеризацией молока, приводит к полному подавлению вирусов в пищевом продукте. В то же время при низких температурах или в замороженном состоянии находящиеся в продуктах вирусы сохраняются столько же, сколько и сами продукты. Следует отметить, что вирусы редко попадают в пищевые продукты при их производстве, хранении и распределении, а преимущественно во время приготовления пищи и при сервировке.

В результате метаболизма не менее чем 150 видов плесневых грибов на определенных пищевых продуктах и в соответствующих условиях образуются вещества (микотоксины), токсичные при пероральном приеме для человека. В то же время очень часто в зараженных грибами продуктах микотоксины отсутствуют. Микотоксины, как правило, резистентны к обычным методам обработки. К числу алиментарных микотических инфекций относят, например, фикомикоз, который вызывают попавшие с пищей в организм человека Mucora сеае, особенно родов Absidia, Rhizopus, Mortierella, Basiodobobus, Mucor и Cunninghamella. Борьба с микотоксикозами состоит в обеспечении условий производства, переработки, хранения, перевозки и распределения пищевых продуктов, обеспечивающих предотвращение образования микотоксинов. Особенно важно предотвратить рост грибов в продуктах при хранении.

Биологические особенности микроорганизма определяют его устойчивость к бактерицидной обработке. Существенную роль при этом играют строение микробной клетки, проницаемость ее оболочек и степень проникновения бактерицидного агента. Установлено, в частности, что расположение на поверхности клеток фосфолипидов способствует устойчивости микробных клеток к действию дезинфектанта.

Устойчивость микроорганизмов к действию бактерицида определяет также их способность к спорообразованию. В этом отношении всю микрофлору делят на образующую и необразующую споры. В качестве санитарно-показательной микрофлоры при контроле качества дезинфекции обычно используют кишечную палочку, которая не образует спор и обладает средней устойчивостью. Наиболее стойкими из неспоровых микробов являются стафилококки и стрептококки, а из них - золотистый стафилококк (St. aureus), который служит эталоном для оценки эффективности обеззараживания. Споровая группа микроорганизмов наиболее устойчива к бактерицидному воздействию различных неблагоприятных факторов. Так, например, споры сибирской язвы сохраняют жизнеспособность в сухой садовой земле в течение 15 лет, в сырой - 4 года, в морской воде - 8-12 лет.

Резистентность к бактерицидному препарату различных штаммов одного и того же вида микрофлоры может сильно различаться, что объясняется способностью многих микроорганизмов образовывать в соответствующих условиях различные мутанты, которые могут в значительной степени отличаться устойчивостью от родительского штамма. Последнее обстоятельство представляет большие трудности для достижения бактерицидного эффекта при обеззараживании объектов. Другим, не менее существенным затруднением при разработке режимов бактерицидной обработки различных объектов является необходимость определения массивности их заражения, поскольку с увеличением концентрации микробных клеток повышается их индивидуальная резистентность к обеззараживающему агенту.

Устойчивость микробных клеток к бактерицидной обработке зависит также от условий культивации. Так, устойчивость кишечной палочки к 30-минутному нагреванию при 326 К различна в зависимости от температуры ее культивирования: число живых клеток в этих условиях среди микроорганизмов, выращенных при 301 К, составляет 7-8%, среди культур, выращенных при 303 К, 24-34%, и среди культур, выращенных при 311,5 К, 65-83%. Причиной такого разброса данных по резистентности бактерий кишечной палочки является тот факт, что при отпимальных условиях размножение микробов происходит в 2 раза быстрее и штаммы, выращенные при температуре 311,5 К, имеют большее количество зрелых клеток, которые обладают более значительной, чем молодые, устойчивостью к теплу в связи с меньшим содержанием влаги в клетке. Типичная кривая развития микрофлоры характеризуется на начальном этапе фазой отставания - лаг-фазой, а затем фазой экспонентного или логарифмического роста. Таким образом, как следует из приведенного примера, важным, способом контроля микробиальной обсемененности является регулирование условий окружающей среды, допускающих присутствие микроорганизмов в фазе отставания.

В этом отношении наибольшую трудность представляют термостойкие бактерии, большинство которых относится к мезофильным микроорганизмам. Эта микрофлора не развивается при температурах пастеризации и кратковременной стерилизации, но многие клетки в культуре способны сохранять свою жизнеспособность, на протяжении всего процесса термической обработки, а после: понижения температуры вновь возобновляют свой рост.

К термостойким бактериям относятся микрококки, стрептококки, аэробные споровые и грамотрицательные палочки. Термофильные спорообразующие бактерии рода Bacillus могут вызвать плоскокислую порчу консервированных овощей (горошек, кукуруза). Термофильные микроорганизмы, быстро развивающиеся при температуре 328 К, могут привести к повышению кислотности молока и развитию пороков вкуса молочных продуктов. В сыром молоке обычно содержится незначительное количество термофильных бактерий, но вполне достаточное, чтобы в процессе длительного хранения молока при высокой температуре их количество значительно возросло. Одним из источников инфицирования молочной продукции термофильной микрофлорой являются танки после мойки горячей водой.

Регулирование температуры на пищевом предприятии - важное средство предотвращения роста вредной и патогенной микрофлоры. Хотя психрофильные бактерии, такие, как Pseudomonas,. Achromobacter и Flavobacterium, могут размножаться почти при температурах замерзания, интенсивность их роста в этом температурном интервале низка, а соответствующая обработка морозильных установок и холодильных камер может предотвратить рост этих микроорганизмов. Хранение при низкой температуре является обычным способом повышения стойкости пищевых продуктов. В этих условиях наличие бактерий, способных довольно хорошо развиваться при низкой температуре, будет отрицательно влиять на стойкость продуктов.

Мезофильные микроорганизмы поддаются контролю легче, чем психрофильные виды. Однако при нормальной комнатной температуре, обычной для большинства пищевых предприятий, эти микроорганизмы быстро растут и образуют слизи на инспекционных транспортерах и оборудовании, если не соблюдать жесткие санитарные требования.

Помимо температуры, к основным внешним факторам, определяющим эффективность борьбы с микробиальной обсемененностью, относятся влажность воздуха, величина pH и присутствие: подходящих питательных сред.